<<
>>

ВЫДЕЛЕНИЕ И ОЧИСТКА МЕМБРАННЫХ БЕЛКОВ

Исследование структурно-функционального состояния мемб­ранных белков осуществляют после проведения двух важнейших этапов:

— выделения и очистки определенного белка;

— анализа полученной фракции для определения ее чистоты и исследования структуры чистого компонента.

В разделе 5.2. были охарактеризованы методы выделения мем­бранных структур, которые широко используются и для получе­ния мембранных белков. Поэтому остановимся на некоторых воп­росах, касающихся очистки интегральных мембранных белков с применением детергентов.

Детергенты — это группа амфифильных соединений, кото­рые способны связываться с гидрофобными участками мембран­ных белков, контактирующими с липидной фазой мембран, тем самым разрушая ее структуру. В ходе солюбилизации мембран детергентами последние модифицируют бислой липидов, разрых­ляя его, затем образуют смешанные (белок-липид-детергентные) мицеллы, а в конечном итоге — детергент-белковые и липид- детергентные мицеллы. Для сохранения мембранных белков в растворимом состоянии необходимо постоянное присутствие де­тергента. Его удаление приводит к агрегации и последующему осаждению молекул белка.

Основной проблемой очистки белков является подбор де­тергента и оптимальных условий солюбилизации их молекул. Детергент не должен нарушать высшие типы пространствен­ной организации белков, а лишь замещать молекулы липидов, контактирующие с гидрофобными участками белковой глобу­лы. Критерий максимальной солюбилизации белка — переход его молекул в надосадочную жидкость после осаждения мемб­ран. Причем важным требованием процедуры солюбилизации является сохранение функциональной активности биополиме­ра и его стабилизация. Для этого в исследуемую систему до­бавляют экзогенные фосфолипиды, глицерин, ингибиторы про­теаз. Следует отметить, что получаемые при очистке белок- детергентные комплексы могут содержать значительные ко­личества связанных фосфолипидов, что необходимо учитывать при дальнейшем разделении и характеристике получаемого препарата белка.

При выборе детергента необходимо учитывать:

1) критическую концентрацию мицеллообразования и размер мицелл детергента;

2) заряд детергента;

3) возможность осаждения при определенном значении pH;

4) возможность светопоглощения в диапазоне длин волн, ис­пользуемом при определении концентрации белка оптическим методом (при 280 нм).

Если концентрация детергента превышает критическую концентрацию мицеллообразования, то детергент полностью солюбилизирует мембранные структуры. В противоположном случае (концентрация меньше ККМ) детергент модифицирует мембрану, не разрушая полностью липидный бислой. Кроме того, необходимо учитывать зависимость этого параметра от температуры и ионной силы среды. Детергенты с низкой ККМ, образующие крупные мицеллы, вследствие низкой концент­рации мономеров не способны полностью удаляться при диа­лизе или ультрафильтрации, что может привести к денатура­ции белка при накоплении молекул детергента. Поэтому удоб­нее пользоваться детергентами с высокими значениями ККМ (цвиттерионные детергенты, соли желчных кислот, октилглю- козид). Еще одной характеристикой детергента является его агрегационное число. Это количество молекул, входящих в состав одной мицеллы. Детергенты с высоким агрегационным числом образуют выраженные мицеллярные структуры, ко­торые внедряются в липидный бислой и солюбилизируют его. Детергенты с низким агрегационным числом не способны образовывать собственные мицеллы и лишь встраиваются в бислой липидов.

Выбор детергента для выделения и очистки определенного мембранного белка осуществляется методом проб и ошибок, од­нако исследователи стремятся к использованию минимальных концентраций детергента с целью сохранения нативного струк­турно-функционального состояния изучаемого белка. Наиболее эффективными считают неионные детергенты (тритон Х-100, ок- тилглюкозид), соли желчных кислот (холат, дезоксихолат), цвит­терионные детергенты.

На рис. 60 приведены структурные формулы, а в табл. 18 описаны свойства некоторых детергентов, используемых для вы­деления и очистки мембранных белков.

Необходимо отметить, что свойства растворов солей желчных кислот существенно за­висят от температуры, pH, ионной силы. Эти соединения способ­ны к образованию гелей при сдвиге pH на единицу выше рКа (для холата — 5,2, для дезоксихолата — 6,2).

Рис. 60. Структурные формулы некоторых детергентов, используе мых в мембранологии

Таблица 18

Свойства некоторых детергентов

Детергенты ккм,

ммоль/л

Молеку­

лярная

масса

Размер

мицелл

Агрега­

ционное

число

Удельный

объем,

мл/г

Додецилсульфат натрия (анионный детергент) 1,33 288 24500 85 0,864
Холат натрия (0,15 ммоль/л NaCl, 20 ’С,

pH 9,0)

3 408 2100 5 0,778
Дезоксихолат натрия (0,15 ммоль/л NaCl, 20 *С, pH 9,0) 0,91 392 2300 55 0,771
Тритон Х-100

(незаряженный детергент)*

0,24 628 90000 140 0,908
Твин 80

(незаряженный детергент)*

0,012 1300 76000 60 0,896
P-D-ОВТИЛГЛІОКОЗИД (незаряженный детергент) 25 293 8000 27 0,820
Лаурилдиметиламиноксид (цвиттерионный детергент) 2,2 229 17000 75 1,112
Цвиттергент 3—12 (цвиттерионный детергент) 3,6 335 0,957

* Полидисперсная смесь, приведены средние значения.

5.5.

<< | >>
Источник: Артюхов В.Г., Наквасина М.А.. Биологические мембраны: структурная организация, функции, модификация физико-хими­ческими агентами: Учеб, пособие. - Воронеж: Издательство Во­ронежского государственного университета,2000. — 296 с.. 2000

Еще по теме ВЫДЕЛЕНИЕ И ОЧИСТКА МЕМБРАННЫХ БЕЛКОВ:

  1. 1.2.1. Классификация, структура и функции мембранных белков
  2. 3.3.1. Модификация методики выделения и очистки ДНК малины и ежевики
  3. Изменения белков
  4. Деструкция белков
  5. Денатурация белков
  6. Цитоскелет (мембранный каркас)
  7. Неравновесные состояния белков и их релаксация
  8. Соединение уголовных дел, выделение уголовного дела, выделение в от­дельное производство материалов уголовного дела
  9. Очистка вентиляционного воздуха.
  10. Б. Контроль качества предстерилизационной очистки эндоскопов.
  11. VIII. Предстерилизационная очистка эндоскопов
  12. VI. Очистка эндоскопов
  13. Особенности структуры и функций мембранных рецепторов
  14. Плазматическая мембрана